Авторы
Дога А.В., Мушкова И.А., Борзенок С.А., Каримова А.Н., Хубецова М.Х., Островский Д.С., Образцова М.Р.
ФГАУ НМИЦ «МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва
Аннотация
Актуальность. Общеизвестно, что в эпителии конъюнктивы находятся продуцирующие муцин – бокаловидные клетки и дендритные клетки Лангерганса. Бокаловидные клетки конъюнктивы выделяют растворимые муцины в водно-муциновый слой слезной пленки, выполняя защитную и регуляторную функции. В связи с этим для оценки состояния водно-муцинового слоя слезной пленки возможно проведение цитологического исследования конъюнктивы с целью верификации диагноза синдрома сухого глаза.
Цель. Оценить состояние бокаловидных клеток конъюнктивы у пациентов рефракционного профиля на до- и после операционных этапах.
Материал и методы. В ходе работы сформировано две группы исследования: первая группа – это пациенты с верифицированным диагнозом синдрома сухого глаза и вторая группа – это пациенты с исходно отсутствием признаков синдрома сухого глаза. Пациентам обеих групп выполнялась импрессионная цитология бульбарной конъюнктивы с использованием фильтров «JET BIOFIL» MCE НЕЙЛОН PVDF PES PTFE CA SFCA PES Express после местной анестезии. Полученные образцы фиксировались в 96% этиловом спирте с последующей окраской методом ШИК – Альциановый синий (Labiko, Россия). Оценка образцов осуществлялась с использованием инвертированного светового фазово-контрастного микроскопа IX81 (Olympus, Япония) с интегрированной цифровой фотокамерой XC10 (Olympus, Япония). Забор образцов осуществлялся в сроки до операции, через 7 дней, 1,3 и 6 месяцев после операции.
Результаты и обсуждение. При проведении импрессионной цитологии бульбарной конъюнктивы у пациентов с диагнозом синдром сухого глаза и у пациентов с исходно отсутствием признаков ксероза глазной поверхности до и после проведения кераторефракционной хирургии было отмечено различие в распределении плотности бокаловидных клеток в зависимости от зоны фиксации мазка-отпечатка на глазной поверхности, периода взятия образца (до и на сроках после операции), статуса глазной поверхности до операции и вида технологии лазерной коррекции зрения.
Выводы. Таким образом, цитологическое исследование конъюнктивы совместно со стандартным диагностическим модулем состояния глазной поверхности обеспечивает комплексную оценку патофизиологического звена в верификации диагноза синдрома сухого глаза у пациентов до и после проведения кераторефракционной хирургии.
Ключевые слова: синдром сухого глаза, бокаловидные клетки, слезная пленка, кераторефракционная хирургия.
Список литературы
1. Nelson JD. Impression cytology. Cornea. 1988;7(1):71-81.
2. Nelson J D, Wright JC. Conjunctival goblet cell densities in ocular surface disease. Arch Ophthalmol.1984;102(7):1049-51. doi:10.1001/archopht. 1984.01040030851031.
3. Thatcher RW, Darougar S, Jones, B. Conjunctival impression cytology. Arch Ophthalmol. 1977;95(4):678-681. doi: 10.1001/archopht.1977. 04450040144022.
4. Злобин И.А., Чурашов С.В., Куликов А.Н., Чирский В.С., Черныш В.Ф., Гаврилюк И.О. Импрессионная цитология как метод цитологической диагностики в офтальмологии. Обзор литературы. Офтальмология. 2023;20(1):53-60 [URL].
5. Egbert PR, Lauber S, Maurice DM. A simple conjunctival biopsy. Am J Ophthalmol.1977;84(6):798-801. doi: 10.1016/0002‑9394(77)90499‑8.
6. Tseng SC. Staging of conjunctival squamous metaplasia by impression cytology. Ophthalmology. 1985;92(6):728-733. doi: 10.1016/s0161‑6420 (85)33967‑2.
7. Tseng SC. Concept and application of limbal stem cells. Eye (Lond). 1989;3:141-157. doi: 10.1038/eye.1989.22.
8. Pearse AG. Histochemistry: Theoretical and Applied. 1960:1(2): 55-64.
9. Kunert KS, Tisdale AS, Gipson IK. Goblet cell numbers and epithelial proliferation in the conjunctiva of patients with dry eye syndrome treated with cyclosporine. Arch Ophthalmol. 2002;120:330-337. doi: 10.1001/archopht.120.3.330.
10. McManus JF. Histological and histochemical application of periodic acid. Coloring Technology.1948: 23(3): 99-108. doi: 10.3109/10520294809106232.
11. Kumar P, Bhargava R, Kumar M, Ranjan S, Kumar M,Verma P. The Correlation of Routine Tear Function Tests and Conjunctival Impression Cytology in Dry Eye Syndrome. Korean J Ophthalmol. 2014; 28(2): 122-129. doi: 10.3341/kjo.2014.28.2.122.
12. Nelson JD, Havener VR, Cameron JD. Cellulose acetate impressions of the ocular surface. Dry eye states. Arch Ophthalmol. 1983;101(12):1869-1872. doi: 10.1001/archopht.1983.01040020871007.
13. Singh R, Joseph A, Umapathy T. Impression cytology of the ocular surface. Br J Ophtalmol. 2005;89(12):1655-1659. doi: 10.1136 / bjo.2005.073916.
14. Pflugfelder SC, Tseng SC, Yoshino K, Monroy D, Felix C, Reis BL. Correlation of goblet cell density and mucosal epithelial membrane mucin expression with rose bengal staining in patients with ocular irritation. Ophthalmology. 1997;104(2):223-235. doi: 10.1016/s0161-6420(97)30330-3.
15. Shiboski SC, Shiboski CH , Criswell LA, Baer AN, Challacombe S, Lanfranchi H, Schiødt M, Umehara H, Vivino F, Zhao Y, Dong Y, Greenspan D, Heidenreich AM, Helin P, Kirkham B, Kitagawa K, Larkin G, Li M, Lietman T, Lindegaard J, McNamara N, Sack K, Shirlaw P, Sugai S, Vollenweider C, Whitcher J, Wu A, Zhang S, Zhang W, Greenspan JS, Daniels TE. American College of Rheumatology classification criteria for Sjögren’s syndrome: a data-driven, expert consensus approach in the Sjögren’s International Collaborative Clinical Alliance cohort. Arthritis Care Res. (Hoboken). 2012; 64(4):475-487. doi: 10.1002/acr.21591.
16. Khimani KS, Go JA, Souza RG, Mitchell T, Yu Z, Paiva CS, Saumur M, Stephen C. Regional Comparison of Goblet Cell Number and Area in Exposed and Covered Dry Eyes and Their Correlation with Tear MUC5AC. Sci Rep. 2020; 10: 2933. doi: 10.1038/s41598-020-59956-7.
17. Eroğul Ö, Balcı A, Gobeka H, Efe N, Akdoğan M, Oral AY, Doğan M, Özdemir Ç, Kaşıkçı M,Saraçlı S. Conjunctival Impression Cytology and Tear Film Changes in Sarcoidosis: A Subjective and Objective Diagnosis Study. Turk J Ophthalmol. 2023; 53(4): 200-205. doi: 10.4274/tjo.galenos.2022.58153.
18. Lin T, Filek R, Wang JM, Wu Ch.W, Liu H, Hutnik C. Impression cytology implicates cell autophagy in aqueous deficiency dry eye. Clin Ophthalmol. 2017; 11: 773-779. doi: 10.2147/OPTH.S124889.
19. Pflugfelder SC, De Paiva CS, Moore QL, Volpe EA, Li DQ, Gumus K, Zaheer ML, Corrales RM. Aqueous tear deficiency increases conjunctival interferon-γ (IFN-γ) expression and goblet cell loss. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015;56:7545-7550. doi: 10.1167/iovs.15-17627.
20. Nicolle P, Liang H, Reboussin E, Rabut G, Warcoin E, Brignole-Baudouin F, Melik-Parsadaniantz S , Baudouin Ch, Labbe A, Goazigo AR. Proinflammatory markers, chemokines, and enkephalin in patients suffering from dry eye disease. Int J Mol Sci. 2018;19(4):1221. doi: 10.3390/ijms19041221.
21. Goyal S, Chauhan SK, Zhang Q, Dana R. Amelioration of murine dry eye disease by topical antagonist to chemokine receptor 2. Arch. Ophthalmol. 2009;127(7):882-887. doi: 10.1001/archophthalmol.2009.125.
22. Shu Ch.W, Bee YS, Chen JL,Tsen Ch.L,Tsai WL, Sheu SJ,Jan YK. Detection of Autophagy-Related Gene Expression by Conjunctival Impression Cytology in Age-Related Macular Degeneration. Diagnostics (Basel). 2021; 11(2): 296. doi: 10.3390/diagnostics11020296.
23. Athmanathan S, Bandlapally SR, Rao GN. Collection of corneal impression cytology directly on a sterile glass slide for the detection of viral antigen: An inexpensive and simple technique for the diagnosis of HSV epithelial keratitis – A pilot study. BMC Ophthalmol. 2001; 1: 3. doi: 10.1186/1471-2415-1-3.
